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        發(fā)布于 2026-01-21
        IPTG誘導(dǎo)原理(原核表達(dá))及實(shí)驗(yàn)步驟全面解析
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        IPTG誘導(dǎo)原理(原核表達(dá))

        在原核蛋白表達(dá)體系中,如E.coli(大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)),外源基因通常需要誘導(dǎo)劑的誘導(dǎo)才能進(jìn)行表達(dá),本文詳細(xì)講述了常用誘導(dǎo)劑IPTG誘導(dǎo)原理,對(duì)外源蛋白誘導(dǎo)表達(dá)原理以及實(shí)驗(yàn)步驟。


        原核生物絕大多數(shù)的基因按功能相關(guān)性成簇地排列,且密集于染色體上,共同形成一個(gè)轉(zhuǎn)錄單位——操縱子,也稱基因表達(dá)的協(xié)同單位。E.coli的乳糖操縱子含Z、Y及A三個(gè)結(jié)構(gòu)基因,分別編碼β-半乳糖苷酶(β-galactosidase)、通透酶(permease)和乙酰基轉(zhuǎn)移酶(transacetylase);此外還有調(diào)控基因:操縱序列O(operator)、啟動(dòng)序列P(promoter);而I(編碼Lac阻遏物,Lac repressor)不屬于乳糖操縱子。


        乳糖操縱子結(jié)構(gòu)基因


        IPTG誘導(dǎo)原理.

        Lac阻遏物是一種具有4個(gè)相同亞基的四級(jí)結(jié)構(gòu)蛋白,都有一個(gè)與誘導(dǎo)劑結(jié)合的位點(diǎn)。在沒(méi)有乳糖存在時(shí),lac操縱子(元)處于阻遏狀態(tài),Lac阻遏物(即下圖中的阻遏蛋白)能與操縱基因O結(jié)合,阻礙RNA聚合酶與P序列結(jié)合,阻止了轉(zhuǎn)錄的路徑,從而抑制轉(zhuǎn)錄啟動(dòng)。而當(dāng)有誘導(dǎo)劑(這里指IPTG)存在時(shí),誘導(dǎo)劑可與阻遏蛋白結(jié)合,使阻遏蛋白構(gòu)象發(fā)生變化,導(dǎo)致阻遏物從操縱基因O上解離下來(lái),RNA聚合酶不再受阻礙,啟動(dòng)子P開(kāi)始發(fā)生轉(zhuǎn)錄,啟動(dòng)反應(yīng)開(kāi)始發(fā)生轉(zhuǎn)錄。


        在這個(gè)操縱子(元)體系中,真正的誘導(dǎo)劑并非乳糖本身。乳糖進(jìn)入細(xì)胞,經(jīng)β-半乳糖苷酶催化,轉(zhuǎn)變?yōu)榘肴樘恰瓷砩系恼T導(dǎo)劑。而在實(shí)驗(yàn)中,通常選用異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)作為誘導(dǎo)劑,IPTG是一種作用極強(qiáng)的誘導(dǎo)劑,不被細(xì)菌代謝而十分穩(wěn)定,因此被實(shí)驗(yàn)室廣泛應(yīng)用。
        IPTG誘導(dǎo)表達(dá)原理圖

        IPTG誘導(dǎo)表達(dá)實(shí)驗(yàn)方法

        原核表達(dá)鑒定詳細(xì)實(shí)驗(yàn)步驟


        1. 表達(dá)鑒定第一天的任務(wù),常用抗性選擇根據(jù)感受態(tài)細(xì)胞選擇
        • 拿到質(zhì)粒,離心(3000r/min;2min)
        • 在質(zhì)粒中加入TE【使質(zhì)粒最終加入到110μL感受態(tài)細(xì)胞中的量為80-100ng,據(jù)此確定加入TE的量】,一般為(1μg質(zhì)粒加20μLTE;2μg質(zhì)粒加50μLTE;5μg質(zhì)粒加100μL TE)
        • 將質(zhì)粒與TE混勻,吸取2μL混液與感受態(tài)細(xì)胞混勻
        • 將感受態(tài)細(xì)胞放入冰箱(4℃)中,30min
        • 取出后立即放入水浴鍋中(42℃),熱激90s,
        • 再次放入冰箱(4℃)中,3min
        • 拿出后取200μL的LB液體培養(yǎng)基加入到已轉(zhuǎn)入質(zhì)粒的感受態(tài)細(xì)胞中
        • 放入搖床(37℃;  195r) 中,  30nim至60min; (最佳45min)
        • 取出離心(3000r/min;2min)
        • 去掉200μL的上清,留100μL左右上清懸浮沉淀,吸取50μL懸液涂平板,【先將對(duì)應(yīng)抗性的平板放入培養(yǎng)箱(37℃)中預(yù)熱20min】
        • 把平板放入培養(yǎng)箱(37℃),過(guò)夜(12h至16h)
         2.表達(dá)鑒定第二天的任務(wù),注意Pcold表達(dá)載體的表達(dá)溫度


        • 每個(gè)平板挑取單菌落至4支對(duì)應(yīng)抗性的LB(4ml)試管中,編號(hào)為“0”“1”“2”“3”
        • 將試管放入搖床(37℃;195r) 中,【單抗3h左右;雙抗4h左右;剛開(kāi)始用可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)OD值;熟練后可目測(cè)(背光下,以試管中的槍頭為例,剛剛看不見(jiàn)槍頭即可)】,測(cè)OD值(0.6至0.8)
        • 從“0”號(hào)管中取700μL懸液加入到100μL(C=80%)的保種甘油中,震勻,放入冰箱(-20℃)凍存
        • 在每組菌的“1”“2”“3”號(hào)試管中分別加入2μL的IPTG【終濃度0.5mM最適,可根據(jù)日后表達(dá)摸索】
        • 視不同的載體選擇適合的表達(dá)環(huán)境【PET/PGEX:15℃表達(dá)過(guò)夜;25℃表達(dá)6h;37℃表達(dá)3h至4h(4支試管,“0”“1”號(hào)試管15℃表達(dá)過(guò)夜;“2”“3”試管37℃表達(dá)3h至4h)。Pcold:【全部15℃表達(dá)過(guò)夜】

        3.表達(dá)鑒定第三天,全菌的表達(dá)鑒定分析,注意控制溶質(zhì)的量及溶液黏度

        • 從每組4支的試管中均取500μL菌液加入到1.5ml離心管中,【若OD值不一樣,值小的可多取】離心(6000r/min),5min, 去上清,留沉淀【沉淀少的,可再取菌液離心,盡量使沉淀量接近】
        • 在每個(gè)離心管中加入500μL的DDH2O,懸浮沉淀,離心(6000r/min),5min, 去上清,留沉淀
        • 在每支離心管中加入45μL的1×PBS和45μL的2×Loading Buffer懸浮沉淀【當(dāng)溶質(zhì)適量且均一的情況下,加入量不變;當(dāng)溶質(zhì)多且粘稠時(shí),應(yīng)使加入量增大,為降低粘度也可減少上液量】
        • 放入煮樣器(100℃) 25min
        • 取出后離心(6000r/min)  3min,  電泳檢測(cè)。
        • 蛋白表達(dá)量不錯(cuò),進(jìn)行蛋白純化.蛋白表達(dá)量低或者沒(méi)表達(dá)就菌株與質(zhì)粒、誘導(dǎo)條件、目的蛋白特性、培養(yǎng)環(huán)境及檢測(cè)環(huán)節(jié)五大類來(lái)進(jìn)行排查分析。

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